Características de los Tintes o Marcadores Fluorescentes

Características de los Tintes o Marcadores Fluorescentes

Ofrecemos una variedad de tintes fluorescentes de moléculas pequeñas (refiriéndose típicamente a tintes fluorescentes con un peso molecular de alrededor de 1000D), representados por las series de cianinas y tintes Fluor. Estos son adecuados para la mayoría de los canales/filtros de detección en diversos instrumentos de pruebas, y muchos tintes fluorescentes de moléculas pequeñas pueden utilizarse para detección multiplexada. Esta serie de tintes fluorescentes cubre espectros de ultravioleta cercano, luz visible e infrarrojo cercano, y es compatible con fuentes comunes de luz de excitación e instrumentos. A continuación, proporcionamos introducciones detalladas a algunos tintes, que pueden servir como referencia para los usuarios al seleccionar kits de tinción de anticuerpos proteicos fluorescentes, anticuerpos secundarios fluorescentes, anticuerpos de citometría en flujo, etc.

Tabla de Comparación de Características de Tintes Fluorescentes

Nombre de la Luz Emitida Nombre del Tinte Aplicaciones Comunes Ex max/Em max Tintes Equivalentes/Aproximados
Azul Fluor350 Imagen de IF 346nm/445nm AMCA, Coumarin
Azul-Violeta Fluor405 FC, IF Imaging 400nm/424nm
Verde Cyanine2 IF Imaging 490nm/510nm
FITC FC, IF Imaging 495nm/520nm
Fluorescein-X FC 495nm/519nm
Fluor488 FC, IF Imaging 490nm/513nm Cy2, Fluorescein-X,FITC (Fluoresceina)
Amarillo-VerdeFluor430IF Imaging430nm/545nm
Fluor532 IF Imaging 530nm/555nm
AmarilloCyanine3IF Imaging548nm/563nm
Fluor555 IF Imaging 555nm/572nm Cy3, TRITC (Rodamina)
NaranjaFluor568IF Imaging, FC578nm/602nmRhodamine Red
Fluor590 IF Imaging 590nm/620nm
Fluor594 IF Imaging, FRET 590nm/617nm Texas Red
Texas RedFluor647FC, IF Imaging651nm/668nmCy5,APC
Cyanine5 IF Imaging 646nm/662nm
Cyanine5.5 IF Imaging, FRET 675nm/694nm
Rojo CercanoFluor680IF Imaging680nm/702nmCy5.5, IR680
Fluor700 FC 702nm/723nm
Fluor750 IF Imaging 747nm/770nm Cy7
Cyanine7 IF Imaging,FRET 750nm/773nm
Fluor770 WB Fluorescence 770nm/790nm

Introducción a las Características de los Tintes o Marcadores Fluorescentes

Fluor350

Fluor350 es un tinte fluorescente azul excelente, un tinte modificado basado en el esqueleto del tinte de coumarina 7-AMCA. Puede servir como una excelente alternativa a AMCA, utilizado comúnmente en imagenología fluorescente y análisis de citometría en flujo, con buena solubilidad en agua e insensibilidad al pH. Los espectros de excitación y emisión de Fluor350 son cercanos a los de DAPI, y puede ser directamente visualizado utilizando conjuntos de filtros DAPI.

Esquema químico de Fluor350SE
Figura 1: Esquema del esquema químico de Fluor350SE, mostrando su composición molecular y método de enlace
Gráfico de espectros de Fluor350
Figura 2: Espectros de excitación y emisión de Fluor350, mostrando sus características de excitación en 346nm y emisión en 445nm
Gráfico de espectros 350 vs AMCA
Figura 3: Comparación de espectros de Fluor350 y tinte aproximado (AMCA, DAPI)
Comparación de Fluor350 vs AMCA
Figura 4: Comparación de la intensidad fluorescente relativa entre Fluor350 y AMCA, mostrando el excelente rendimiento de Fluor350 después de la tinción proteica

Referencias de Aplicación:

  1. Rothschild, K. J.; Gite, S.; Olejnik, J. Métodos para la detección, análisis y aislamiento de proteínas nascentes. U.S. Pat. Appl. Publ. US 20110250609,2011.
  2. Zauner, G.; Lonardi, E.; Bubacco, L.; Aartsma,T. J.; Canters, G. W.; Tepper, A. W. J. W. Transferencia de energía fluorescente triptófano-a-tinte aplicada a la detección de oxígeno utilizando proteínas de cobre tipo 3. Chem.- Eur. J. 2007, 13, 7085--7090.
  3. Gee, K. R.; Hart, C. CR.; Haugland, R.; Patton,W. F.; Whitney, S. Etiquetado sitio-específico de dominios de afinidad en proteínas fusionadas. U.S. Pat. Appl. Publ. US.20060141554, 2006.
Fluor405

El máximo de excitación/emisión del tinte fluorescente azul Fluor405 es 400/424nm, que coincide casi perfectamente con las líneas espectrales del láser violeta de 405nm ampliamente utilizado en microscopía fluorescente y citometría en flujo. Los espectros de excitación y emisión de Fluor405 superponen altamente a los del tinte BV421. Fluor405 es un derivado del tinte Cascade Blue, pero con propiedades fluorescente optimizadas después de la modificación estructural. La superposición espectral entre el tinte Fluor405 y fluoróforos verdes es mínima, lo que lo convierte en una elección ideal para aplicaciones multicolor.

Esquema químico de Fluor405SE
Figura 1: Esquema del esquema químico de Fluor405SE, mostrando su composición molecular y método de enlace
Gráfico de espectros de Fluor405
Figura 2: Espectros de excitación y emisión de Fluor405
Gráfico de espectros 405 vs DyLight/BV
Figura 3: Comparación de Fluor405 y espectros de tinte aproximado (DyLight 405, BV421)

Referencias de Aplicación:

  1. Jones SA, Shim SH, He J, Zhuang .Imagen super-resolutiva tridimensional rápida de células vivas. Nat Methods. 2011 Jun;8(6):499-508.
  2. Camila van Zanten , Dzmitry Melnikau , Alan G Ryder.Efectos de la Viscosidad y el Índice de Refracción en las Propiedades de Emisión y Difusión de Alexa Fluor 405 usando Espectroscopía de Correlación y Vida Fluorescente. J Fluoresc. 2021 May;31(3):835-845.
Fluor430

Entre los tintes activos que absorben luz en el rango de longitudes de onda de 400-450nm, usualmente no se produce fluorescencia significativa por encima de 500nm. El tinte Fluor430 llena este vacío en el rango de longitudes de onda. Cuando se excita cerca de su pico de absorción a 430nm, este tinte exhibe un gran desplazamiento Stokes y una intensa fluorescencia amarillo-verde.

Esquema químico de Fluor430SE
Figura 1: Esquema del esquema químico de Fluor430SE, mostrando su composición molecular y método de enlace
Gráfico de espectros Fluor430
Figura 2: Espectros de excitación y emisión de Fluor430

Referencias de Aplicación:

  1. Tsilivakos, V.; Gritzapis, A. Método de detección de agentes infecciosos intracelulares en células espermáticas. PCT Int.Appl. WO 2013144662, 2013.
  2. Arcangeli, A.; Becchetti, A.; Pillozzi, S.; Masselli,M.; De Lorenzo, E. Método y kit para la prevención y/o el monitoreo de quimiorresistencia de formas leucémicas. PCT Int. Appl. WO 2011058509,2011.
  3. Lewis B, Rathman S, McMahon RJ.Detección y cuantificación de proteínas biotiniladas usando el Escáner Óptico Storm 840.J Nutr Biochem.2003 Abr;14(4):196-202.
Fluor488

Fluor488 es rodamina verde sulfonada. Al introducir dos iones sulfonato, Fluor488 ha mejorado significativamente la solubilidad en agua, estabilidad al pH y fotostabilidad. A diferencia de los tintes de fluoresceína, la fluorescencia de Fluor488 permanece invariable a través de un amplio rango de pH (4-10). Debido a sus múltiples cargas negativas, Fluor488 es menos propenso a la agregación intermolecular, y cuando múltiples moléculas de tinte etiquetan la misma proteína, es menos propenso a la auto-extinción fluorescente o a causar agregación proteica. Fluor488 es un excelente sustituto para la fluoresceína (FITC o FAM) y CY2, desempeñándose extremadamente bien en detección de moléculas bioconjugadas individuales, espectroscopía de correlación fluorescente y mediciones de polarización fluorescente. También se utiliza ampliamente en microscopía fluorescente y citometría en flujo. Fluor488 es actualmente uno de los mejores tintes fluorescentes verdes de moléculas pequeñas solubles en agua.

Esquema químico de Fluor488SE
Figura 1: Esquema del esquema químico de Fluor488SE, mostrando su composición molecular y método de enlace
Gráfico de espectros Fluor
Figura 2: Espectros de excitación y emisión de Fluor488
Gráfico de espectros 488 vs Cy2/FITC
Figura 3: Comparación de Fluor488 y espectros de tinte aproximado (Cy2, FITC)
Comparación Fluor488 vs FITC
Figura 4: Comparación de intensidad fluorescente relativa entre anticuerpos conjugados con IgG anti-muñón preparados con tinte Fluor 488 y fluoresceína isotiocianato (FITC). Usando la misma cantidad de anticuerpo, los resultados muestran que los anticuerpos etiquetados con Fluor 488 tienen mayor brillo fluorescente.
Comparación Fluor488 vs Cy2
Figura 5: Comparación de brillo entre anticuerpos anti-muñón IgG de conejo etiquetados con Fluor488 y anticuerpos anti-muñón IgG de conejo etiquetados con Cy2. Las muestras de células sanguíneas humanas fueron bloqueadas primero con suero normal de conejo, luego incubadas con anticuerpos monoclonales anti-CD3 de ratón, las células se lavaron, re-suspendieron y luego incubadas con la misma concentración de anticuerpos secundarios anti-muñón IgG etiquetados con Fluor 488 o Cy2 respectivamente. Después de lisado de glóbulos rojos, la detección por citometría en flujo mostró que los anticuerpos secundarios etiquetados con Fluor488 fueron más efectivos.
Comparación Fluor488 vs Cy2
Figura 6: Usando Fluor488 y FITC para etiquetar directamente anticuerpos monoclonales anti-Muñón CD4, usando la misma cantidad de anticuerpo, citometría en flujo detectó intensidad de señal, los anticuerpos anti-Muñón CD4 etiquetados con Fluor488 tuvieron mayor intensidad de señal fluorescente.

Referencias de Aplicación:

  1. Karver, M. R.; Weissleder, R.; Hilderbrand, S. A.Pares de reacciones bioortogonales permiten imagen simultánea, selectiva, multi-diana. Angew. Chem., Int.Ed. 2012, 51, 920--922.
  2. Lundberg, E.; Sundberg, M.; Graeslund, T.; Uhlen,M.; Svahn, H. A. Un nuevo método para etiquetado fluorescente reproducible de pequeñas cantidades de anticuerpos en fase sólida. J. Immunol. Methods 2007, 322,40--49.
  3. Comparación entre fotostabilidad de Alexa Fluor 448 y Alexa Fluor 647 con tintes convencionales FITC y APC por citometría en flujo.Int J Lab Hematol. 2018 Jun;40(3):e52-e54.
Fluor555

Fluor555 es un tinte fluorescente naranja-rojizo, un análogo de Cyanine3, utilizado comúnmente para reemplazar tintes Cyanine3 y TAMRA. El tinte Fluor555 tiene alta polaridad, solubilidad fuerte en agua, excelente brillo fluorescente y estabilidad fluorescente, lo que lo convierte en un buen tinte para etiquetado proteico/anticuerpo. Desde una perspectiva de estructura química, el núcleo padre de Fluor555 es la cianina Cyanine3, pero el núcleo padre tiene hasta 4 grupos ácido sulfónico. La estructura tetrasulfónica lo hace extremadamente hidrofílico, y cuando el tinte se etiqueta en la superficie proteica, no cambia la polaridad de la superficie proteica, reduciendo el riesgo de agregación proteica hidrófoba y precipitación, y reduciendo enormemente la probabilidad de extinción fluorescente debido a la proximidad local del tinte. Por lo tanto, las proteínas etiquetadas con Fluor555 suelen emitir una fluorescencia más fuerte. Sin embargo, porque la mayoría de los citómetros en flujo actuales en el mercado son citómetros en flujo tradicionales (no citómetros espectrales), la compatibilidad láser no es óptima, por lo que el tinte Fluor555 se usa más en el campo de imagenología fluorescente.

Gráfico de espectros Fluor
Figura 2: Espectros de excitación y emisión de Fluor555
Gráfico de espectros 555 vs Cy3/TRITC
Figura 3: Comparación de Fluor555 y tintes aproximados (Cy3, TRITC)
Comparación Fluor555 vs Cy3 1
Figura 4: Iluminando continuamente concentraciones equimolares de Fluor 555 libre y Cy3, se recolectaron puntos de datos cada cinco segundos. La intensidad fluorescente ha sido normalizada a la misma intensidad inicial. Los resultados muestran que Fluor 555 tiene una resistencia más excelente al fotoblanqueamiento.
Comparación Fluor555 vs Cy3 2
Figura 5: Comparación de intensidad fluorescente relativa entre anticuerpos conjugados con IgG anti-conejo etiquetados con dos tintes (Fluor555 y Cy3) en diferentes ratios de tinte-proteína. Muestra que Fluor555 tiene mayor intensidad fluorescente relativa, y la señal no decae cuando el grado de etiquetado (DOL) es tan alto como 8 o superior.

Referencias de Aplicación:

  1. Arcangeli, A.; Becchetti, A.; Pillozzi, S.; Masselli,M.; De Lorenzo, E. Método y kit para la prevención y/o el monitoreo de quimiorresistencia de formas leucémicas. PCT Int. Appl. WO 2011058509,2011.
  2. Lundberg, E.; Sundberg, M.; Graeslund, T.; Uhlen,M.; Svahn, H. A. Un nuevo método para etiquetado fluorescente reproducible de pequeñas cantidades de anticuerpos en fase sólida. J. Immunol. Methods 2007, 322,40--49.
Fluor568

El tinte fluorescente Fluor568 coincide perfectamente con láseres de 561nm. El máximo de excitación/emisión de este tinte rojizo-naranja es aproximadamente 578/602nm, lo que puede lograr un efecto de excitación óptimo en el diodo láser de 561nm utilizado en muchos microscopios de barrido láser confocal. Fluor568 tiene un núcleo padre de compuestos rodamina, y se introducen dos iones sulfonato para optimizar la solubilidad en agua y propiedades ópticas del tinte. Cuando se excita, emite una fluorescencia naranja-rojiza brillante, que es muy sensible y estable, y puede utilizarse para detectar objetivos de baja abundancia. Es un excelente tinte fluorescente soluble en agua de molécula pequeña.

Gráfico de espectros Fluor
Figura 2: Espectros de excitación y emisión de Fluor568
Gráfico de espectros 568 vs Rhodamine Red
Figura 3: Comparación de Fluor568 y espectros de tinte aproximado (Rhodamine Red)

Referencias de Aplicación:

  1. Jafar Mahmoudian, Reza Hadavi, Mahmood Jeddi-Tehrani.Comparación de las características de fotoblanqueamiento y fotostabilidad de Anticuerpo conjugado con Alexa Fluor 568 e Isoiocianato de Fluoresceína.Cell J. 2011 Fall;13(3):169-72.
  2. Seyed Nasser Ostad, Sepideh Babaei , Ali Ahmad Bayat. Comparación de Fotoblanqueamiento de R-Ficoeritrina-Streptavidina y Streptavidin-Alexa Fluor 568 en una Línea Celular de Cáncer de Mama. Monoclon Antib Immunodiagn Immunother. 2019 Feb;38(1):25-29.
  3. Tamás Gajdos , Béla Hopp.Propiedades de Fluorescencia Anti-Stokes Caliente de Alexa Fluor 568.J Fluoresc.2020 May;30(3):437-443.
Fluor594

Fluor594 es un compuesto de rodamina metilado sobre la base de la estructura Fluor568. Dos iones sulfonato también juegan un papel en optimizar las propiedades del tinte. Cuando se excita, emite una fluorescencia roja brillante, que es muy sensible y estable, y puede utilizarse para detectar objetivos de baja abundancia. Fluor594 es un excelente tinte fluorescente soluble en agua de molécula pequeña, adecuado para etiquetar diversas moléculas objetivo, y utilizado ampliamente en diversos experimentos biológicos. Los conjugados preparados con el tinte Fluor594 emiten fluorescencia en la región roja del espectro, por lo que son particularmente adecuados para experimentos de etiquetado multiplex combinados con sondas fluorescentes verdes. Las características espectrales de Fluor594 son similares a las de Cyanine3.5 y Texas Red, pero la intensidad de fluorescencia es más fuerte, convirtiéndolo en un excelente sustituto para Texas Red.

Esquema químico de Fluor594SE
Figura 1: Esquema del esquema químico de Fluor594SE, mostrando su composición molecular y método de enlace
Gráfico de espectros Fluor
Figura 2: Espectros de excitación y emisión de Fluor594
Gráfico de espectros 594 vs Texas Red
Figura 3: Comparación de Fluor594 y espectros de tinte aproximado (DyLight 594, Texas Red)
Comparación Fluor 594 vs Texas Red
Figura 4: Comparación de intensidad fluorescente relativa entre anticuerpos anti-muñón IgG etiquetados con Fluor 594 y Texas Red-X a diferentes ratios de tinte-proteína. Muestra que Fluor 594 tiene una intensidad fluorescente más fuerte.

Referencias de Aplicación:

  1. Arcangeli, A.; Becchetti, A.; Pillozzi, S.; Masselli,M.; De Lorenzo, E. Método y kit para la prevención y/o el monitoreo de quimiorresistencia de formas leucémicas. PCT Int. Appl. WO 2011058509,2011.
  2. Green, D. P. L.; Rawle, C. B. Sistema y método de análisis. PCT Int. Appl. WO 2009082242, 2009.
  3. N Panchuk-Voloshina , R P Haugland, J Bishop-Stewart. Alexa dyes, una serie de nuevos tintes fluorescentes que producen conjugados excepcionalmente brillantes y fotostables. J Histochem Cytochem. 1999 Sep;47(9):1179-88.
Fluor647

El espectro del tinte fluorescente Fluor647 coincide casi completamente con el de Cyanine5, por lo que la compatibilidad con filtros ópticos diseñados para Cyanine5 también puede ser óptima. Sin embargo, la intensidad fluorescente total de los conjugados de anticuerpos Fluor647 suele ser significativamente mayor que la de los conjugados de Cyanine5. Además, cuando Fluor647 se conjugan con la mayoría de las proteínas, oligonucleótidos y ácidos nucleicos, su absorbancia o espectro fluorescente muestra casi ningún cambio, por lo que bajo el mismo grado de sustitución, la intensidad fluorescente total es mayor, convirtiéndolo en un excelente sustituto para Cyanine5.

Espectro Fluor647
Figura 1: Espectros de excitación y emisión de Fluor647
Gráfico de espectros 647 vs APC/Cy5
Figura 2: Comparación de Fluor647 y espectros de tinte aproximado (APC, Cy5)
Comparación Fluor647 vs CY5
Figura 3: Comparación del brillo de conjugados de anticuerpos fluorescentes con Fluor647 y Cy5. Muestra que el brillo de los conjugados de Fluor 647 es mucho mayor que el de los conjugados usando Cy5.

Referencias de Aplicación:

  1. Liming Ou, Qingyu Lv, Canjun Wu, Huaijie Hao. Desarrollo de un ensayo inmunocromatográfico de flujo lateral para detección rápida de IgM específica de Mioplasma pneumoniae en especímenes de suero humano.J Microbiol Methods. 2016 May:124:35-40.
  2. N Panchuk-Voloshina , R P Haugland, J Bishop-Stewart. Alexa dyes, una serie de nuevos tintes fluorescentes que producen conjugados excepcionalmente brillantes y fotostables. J Histochem Cytochem. 1999 Sep;47(9):1179-88.
  3. Ryo Tsumura , Ryuta Sato , Fumiaki Furuya.Estudio de viabilidad del fragmento Fab de un anticuerpo monoclonal contra el factor tisular como herramienta diagnóstica.Int J Oncol. 2015 Dec;47(6):2107-14.
  4. Comparación entre fotostabilidad de Alexa Fluor 448 y Alexa Fluor 647 con tintes convencionales FITC y APC por citometría en flujo.Int J Lab Hematol. 2018 Jun;40(3):e52-e54.
Fluor680

La longitud de onda de excitación pico del tinte Fluor680 es 680nm, y la longitud de onda de emisión máxima es 702nm. Sus características espectrales son similares al tinte Cyanine5.5. La fluorescencia del tinte Fluor680 está claramente separada de las señales de emisión de otros tintes rojos comúnmente utilizados (como tetrametilrodamina, R-ficoeritrina, Fluor594 y Fluor647), por lo que es muy adecuado para etiquetado multicolor.

Gráfico de espectros Fluor680
Figura 1: Espectros de excitación y emisión de Fluor680
Gráfico de espectros 680 vs Cy5.5
Figura 2: Comparación de espectros fluorescentes entre Fluor680 y Cy5.5. Muestra que sus espectros son básicamente consistentes.

Referencias de Aplicación:

  1. Ogawa, M.; Regino, C. A.; Choyke, P. L.; Kobayashi,H. Etiquetado óptico específico de objetivo activable in vivo de anticuerpos monoclonal humanizados.Mol. Cancer Ther. 2009, 8, 232--239.
  2. N Panchuk-Voloshina , R P Haugland, J Bishop-Stewart. Alexa dyes, una serie de nuevos tintes fluorescentes que producen conjugados excepcionalmente brillantes y fotostables. J Histochem Cytochem. 1999 Sep;47(9):1179-88.
Fluor750

Fluor750 es espectralmente muy similar al tinte Cyanine7, y es un excelente sustituto para Cyanine7. La longitud de onda máxima de emisión fluorescente es 770nm, que está lejos de la longitud de onda de emisión máxima de sustancias fluorescentes rojas comúnmente utilizadas (Fluor647 o APC), lo que facilita el análisis multicolor.

Gráfico de espectros Fluor750
Figura 1: Espectros de excitación y emisión de Fluor750
Gráfico de espectros 750 vs Cy7
Figura 2: Comparación de Fluor750 y espectros de tinte aproximado (Cy7)

Referencias de Aplicación:

  1. Paris-Robidas, S.; Emond, V.; Tremblay, C.; Soulet,D.; Calon, F. Etiquetado in vivo de células endoteliales capilares cerebrales después de la administración intravenosa de anticuerpos monoclonales dirigidos al receptor de transferrina. Mol. Pharmacol. 2011, 80, 32--39.
  2. Paudyal, P.; Paudyal, B.; Iida, Y.; Oriuchi, N.;Hanaoka, H.; Tominaga, H.; Ishikita, T.; Yoshioka,H.; Higuchi, T.; Endo, K. Sonda de imagen molecular dual funcional dirigida a CD20 con PET e imagen óptica. Oncol. Rep. 2009, 22, 115--119.
  3. Moinuddin Hassan 1, Victor Chernomordik, Rafal Zielinski.Método in vivo para monitorear cambios en la expresión de HER2 usando imagenología fluorescente infrarroja cercana.Mol Imaging.2012 Jun;11(3):177-86.

Hansun

Hansun es el experto en etiquetado proteico de EnkiLife, experto en inmunología, diversas técnicas de etiquetado y detección por citometría en flujo. Estamos comprometidos con el etiquetado preciso de proteínas para potenciar los avances científicos y tecnológicos. Cada proteína merece ser "vista".

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